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Exploration fonctionnelle digestive et comportementale

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Résumé
 

L’UMR TENS propose différentes approches expérimentales permettant d’évaluer la perméabilité et la motricité intestinale in vivo et ex vivo. Elle dispose également d'outils afin d'étudier le comportement animal à travers l'axe intestin-cerveau.

 

À savoir : Les projets de recherche nécessitant des expériences sur animaux sont tous préalablement soumis au Ministère de l’enseignement supérieur et de la Recherche  ainsi qu’au comité d’éthique pour validation.

Perméabilité intestinale :
 

la perméabilité intestinale est caractérisée in vivo chez le petit animal à l’aide de marqueurs de perméabilité. Ces marqueurs sont administrés par voie orale, puis ils traversent la barrière intestinale et se retrouvent dans la circulation sanguine. un prélèvement sanguin permet ensuite de doser ces marqueurs et apprécier ainsi la perméabilité intestinale de manière globale.

Afin d’étudier la perméabilité ex vivo dans une portion précise de l’intestin (jéjunum, iléon, colon), notre unité dispose de chambres d’Ussing. Ce dispositif permet de recréer artificiellement 2 compartiments: un compartiment correspondant à la lumière du tube digestif et un compartiment correspondant au milieu sanguin. La perméabilité de la muqueuse intestinale est évaluée en mesurant le passage de « marqueurs », de la lumière du tube vers le milieu sanguin, au travers du fragment d’intestin.

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Motricité intestinale :
 

La motricité intestinale peut être caractérisée in vivo par différentes techniques. Le temps de transit total est évalué en administrant un colorant (non absorbable) et en mesurant le temps écoulé entre l’administration et l’émission d’une selle colorée. Le transit colique est évaluée en mesurant la fréquence d’émission des selles. Le transit colique distal est caractérisé en mesurant le temps écoulé entre l’insertion d’une petite bille de verre et son expulsion.

Afin d’étudier la motricité ex vivo dans une portion précise de l’intestin (jéjunum, iléon, colon), notre unité dispose de chambres de motricité couplées à un système d’acquisition et de stimulation. Ce dispositif permet de caractériser l’activité contractile de segments de tubes digestifs qui dépend de deux composantes: le SNE et les fibres musculaires lisses qu’il innerve. L’utilisation de stimulations électriques en combinaison avec différents agents pharmacologiques permet de caractériser d’une part la réponse du SNE à une stimulation, et d’autre part la réponse des fibres musculaires lisses.

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Comportement animal :

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Test de « l’Open field » :

Étude de l’activité générale – comportement exploratoire - stéréotypie

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Test du « labyrinthe en croix surélevé » :

Étude de l’anxiété

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Test du « Rotarod » :

Étude de l’activité motrice

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Test du « labyrinthe à 3 bras » :

Étude de la mémoire

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Test d’interaction sociale à 3 chambres

Financements

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Publications

Aubert P, Guinobert I, Blondeau C, Bardot V, Ripoche I, Chalard P, Neunlist M. Basal and Spasmolytic Effects of a Hydroethanolic Leaf Extract of Melissa officinalis L. on Intestinal Motility: An Ex Vivo Study. J Med Food. 2019 Jul;22(7):653-662. PMID:30990736 Link

Aubert P, Oleynikova E, Rizvi H, Ndjim M, Le Berre-Scoul C, Grohard PA, Chevalier J, Segain JP, Le Drean G,Neunlist M, Boudin H. Maternal protein restriction induces gastrointestinal dysfunction and enteric nervous system remodeling in rat offspring. FASEB J. 2018 Aug 1 PMID: 30067379. Link

Workman MJ, Mahe MM, Trisno S, Poling HM, Watson CL, Sundaram N, Chang CF, Schiesser J, Aubert P, Stanley EG, Elefanty AG, Miyaoka Y, Mandegar MA, Conklin BR, Neunlist M, Brugmann SA, Helmrath MA, Wells JM. Engineered human pluripotent-stem-cell-derived intestinal tissues with a functional enteric nervous system. Nat Med. 2016 Nov 21. doi: 10.1038/nm.4233. PMID: 27869805. Link

Vanhaecke T, Aubert P, Grohard PA, Durand T, Hulin P, Paul-Gilloteaux P, Ligneul A, Naveilhan P, Boudin H, Fressange-Mazda C, Le Ruyet P, Neunlist M. L. fermentum CECT 5716 prevents stress-induced intestinal barrier dysfunctions in newborn rats. Neurogastroenterol Motil. 2017 Aug;29(8). PubMed PMID: 28370715 Link

Brégeon J, Coron E, Da Silva AC, Jaulin J, Aubert P, Chevalier J, Vergnolle N, Meurette G, Neunlist M. Sacral nerve stimulation enhances early intestinal mucosal repair following mucosal injury in a pig model. J Physiol. 2016 Aug 1;594 (15):4309-23. Link

Provost M, Brégeon J, Aubert P, Duchalais-Dassonneville E, D'Aldebert E, Vergnolle N, Neunlist M, Meurette G. Effects of 1-week sacral nerve stimulation on the rectal intestinal epithelial barrier and neuromuscular transmission in a porcine model. Neurogastroenterol Motil. 2015 Jan;27(1):40-50. Link

Meurette G, Blanchard C, Duchalais-Dassonneville E, Coquenlorge S, Aubert P, Wong M, Lehur PA, Neunlist M. Sacral nerve stimulation enhances epithelial barrier of the rectum: results from a porcine model. Neurogastroenterol Motil. 2012 Mar;24(3):267-e110 Link

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